蛋白质浓缩可是个关键步骤！几种超实用的蛋白质浓缩方法，让你的实验轻松又高效。

1️⃣ 吸附法：简单快捷的“浓缩神器”

吸附法是蛋白质浓缩的“小能手”，特别适合稳定性较差的蛋白质。它的原理超简单，就是用干的惰性多孔基质聚合物，比如葡聚糖凝胶（sephadex），把这些聚合物加入到蛋白质溶液中，它们就能吸收水和其他小分子物质。当凝胶完全膨胀后，通过过滤或者离心把凝胶去除，蛋白质就浓缩啦。

具体操作也很简单，比如把20克干的sephadex G25加入到100毫升的蛋白质溶液中，放置15到20分钟，然后用2000g的离心力离心10分钟，或者用滤纸过滤，蛋白质就浓缩好了。不过，吸附法也有局限性，选择性差，浓缩倍数低，蛋白质收率一般在80%到90%左右。

2️⃣ 超滤法：高效浓缩的“秘密武器”

超滤法是靠离心力或高压力，用孔径1到20纳米的半透膜工作。这膜能让水和小分子过去，蛋白质等大分子就过不去，这样就能把蛋白质浓缩起来。超滤法的好处是操作简单，浓缩效率高，适合大规模浓缩。

选择超滤膜时，截留分子量（MWCO）很重要。理论上，MWCO是10000的膜，分子量超过10000的就截留，小于10000的就能通过。但现实中，膜的孔径分布不均匀，所以选膜的MWCO时，一般选蛋白质分子量的1/3及以下。

不过，要是MWCO选小了，通过膜的速度就会变慢，操作时间延长，还得用更高的压力。现在的塑料膜用得挺多，比如聚碳酸酯、聚酰胺、聚砜、聚氯乙烯和聚丙烯腈这些。这些膜能在更复杂的化学环境下工作，pH值1到13都没问题，还能在很多有机溶剂里用，耐热稳定性也能达到80℃，有些还能自动灭菌。

3️⃣ 沉淀法：经典的“分离浓缩法”

沉淀法是蛋白质浓缩的“老大哥”，通过改变溶液的pH值或离子强度，或者加入有机溶剂、多聚物等，可以促进蛋白质分子的凝聚，从而形成蛋白质沉淀。之后，通过离心或者过滤的方式获得沉淀物，再利用合适的缓冲液对沉淀物进行清洗和溶解，最后经过透析或凝胶过滤，以去除残留的溶剂成分。

沉淀法主要包括盐析法、有机溶剂沉淀法、等电点沉淀法、聚乙二醇沉淀法等。这些方法虽然简单，但选择性差，浓缩倍数低，蛋白质收率也不高。

4️⃣ 透析法：适合小体积样品的“温和法”

透析法是一种比较适合用于50毫升以下样品体积的浓缩方法，但操作时间相对较长。具体操作是将蛋白质溶液放入透析袋中，然后将透析袋放入一个装有聚乙二醇溶液的容器中，使用磁力搅拌器缓慢搅拌，直至蛋白质溶液达到所需的浓度为止。

透析法的优点是操作简单，适合小体积样品，但缺点是浓缩时间长，效率低。

5️⃣ 冷冻干燥法：热敏感蛋白的“保护伞”

冷冻干燥技术在热不稳定的蛋白质、多肽等物质的浓缩以及保存方面发挥着重要的作用。它利用低温和低压的环境来去除可溶性的水，对于一些超滤膜无法截留的低分子量多肽，冷冻干燥法的浓缩效果尤为显著。

冷冻干燥系统主要由干燥箱、真空系统和制冷系统组成。操作时，将需要冻干的样品装入冷冻干燥烧瓶中，然后放入冻干机进行浓缩。干燥后残余水的多少可能会对蛋白质的活性稳定性产生影响，所以需要根据具体需求调整残余水分含量。

6️⃣ 双水相分离法：温和高效的“浓缩法”

双水相分离法是利用两种多聚物，或者多聚物与盐在水相中的不相溶性，可以从细胞破碎后的细胞碎片中直接分离、纯化蛋白质，同时起到浓缩蛋白质的作用。这种方法比较温和，一般不会造成蛋白质的变性失活，操作过程可以在室温下进行，并且双水相中的聚合物还可以提高蛋白质的稳定性。